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原代細胞是從目標(biāo)組織或器官分離出來的異質(zhì)細胞群,包含了多種細胞類型,其中既有終末分化細胞,也包括干細胞、祖細胞以及其他一些仍具有分裂能力的細胞。相關(guān)閱讀:《什么是原代細胞?一文為您解讀》
(A)原代細胞直接來自被工程化的組織。(B)自從小鼠胚胎干細胞顯示出分化成各種器官類型的潛力以來,胚胎干細胞一直受到研究。(C)成體細胞可以從組織中提取,并通過遺傳轉(zhuǎn)錄因子誘導(dǎo)成干細胞狀態(tài),從而重置細胞的表觀遺傳組織。(D)每種組織似乎都有駐留干細胞,有助于修復(fù)該組織。這些成體干細胞可以被分離并用于形成類似的組織。(圖片來源sciencedirect)
原代細胞培養(yǎng)是指從組織中分離出細胞在體外進行早期傳代培養(yǎng)(通常在5代以內(nèi),更嚴格的會在3代以內(nèi))。通過對原代細胞培養(yǎng),科研者可以更好研究細胞生命過程、癌細胞病變、細胞工程等問題,因為它提供更接近體內(nèi)環(huán)境細胞模型。
當(dāng)細胞培養(yǎng)瓶中形成致密單層時,它們基本上已飽和。為了使細胞繼續(xù)生長并增加數(shù)量,必須進行傳代(再培養(yǎng))。懸浮細胞可以直接分瓶,而貼壁細胞需要經(jīng)過消化后才能分瓶。
材料和試劑
細胞:貼壁細胞
試劑:0.25%胰酶、1640培養(yǎng)基(含10%小牛血清)
儀器和器材:倒置顯微鏡、培養(yǎng)箱、培養(yǎng)瓶、吸管、廢液缸等
操作步驟:
步驟1、吸除培養(yǎng)瓶內(nèi)的舊培養(yǎng)液。
步驟2、向瓶內(nèi)加入少許胰蛋白酶和EDTA混合液,以能覆滿瓶底為限。
步驟3、將培養(yǎng)瓶置于溫箱中2~5分鐘,當(dāng)細胞質(zhì)回縮,細胞間隙增大后,立即終止消化。
步驟4、吸除消化液,向瓶內(nèi)注入數(shù)毫升Hanks液,輕輕轉(zhuǎn)動培養(yǎng)瓶,把殘余消化液沖掉。
注意:加Hanks液沖洗細胞時,動作要輕,以免把已松動的細胞沖掉流失。如用胰蛋白酶液單獨消化,吸除胰蛋白酶液后,可不用Hanks液沖洗,直接加入培養(yǎng)液。
步驟5、用吸管吸取營養(yǎng)液輕輕反復(fù)吹打瓶壁細胞,使之從瓶壁脫離形成細胞懸液。注意:吹打細胞力度要適中,對一些脆弱細胞,建議使用細胞刮刀輕輕刮下細胞,避免吹打帶來損傷。
步驟6、計數(shù)板計數(shù)后,把細胞懸液分成等份分裝入數(shù)個培養(yǎng)瓶中,置溫箱中培養(yǎng)。
實驗注意事項:
1.預(yù)熱所有試劑: 將胰蛋白酶/EDTA、Hanks液或培養(yǎng)基預(yù)熱至37℃,可以提高消化效率,并減少對細胞的冷刺激。
2.無菌操作: 所有操作都必須在無菌條件下進行,以防止污染。
3.優(yōu)化消化時間: 不同的細胞類型對胰蛋白酶/EDTA的敏感性不同,需要根據(jù)實際情況調(diào)整消化時間。過短的消化時間會導(dǎo)致細胞無法完全脫離瓶壁,而過長的消化時間則會損傷細胞。
試劑:培養(yǎng)基、平衡鹽溶液
儀器和器材:離心管、吸管或移液器、新的細胞培養(yǎng)瓶/皿、計數(shù)板、凍存管
操作步驟:
步驟1、輕輕混勻細胞懸液:不要劇烈搖晃,以免損傷細胞。可以使用血清移液管輕輕吹打幾次,使細胞懸浮均勻。
步驟2、取少量細胞懸液進行計數(shù):使用計數(shù)板或自動化細胞計數(shù)器對細胞進行計數(shù),確定細胞密度和活力。
步驟3、根據(jù)所需的細胞密度和傳代比例,計算分裝體積:例如,如果需要將細胞密度調(diào)整為1x10^5cells/mL,則需要根據(jù)細胞計數(shù)結(jié)果和分裝后的總體積計算需要轉(zhuǎn)移的細胞懸液的體積。
步驟4、分裝細胞懸液:將計算好的體積的細胞懸液轉(zhuǎn)移到新的培養(yǎng)瓶中,并加入新鮮的培養(yǎng)基至所需的體積。
步驟5、置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng):將分裝好的細胞置于37℃、5%CO2的培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng)。
步驟1、將細胞連同培養(yǎng)液一并轉(zhuǎn)移到離心管內(nèi),離心800-1000rpm,5分鐘。
步驟2、去除上清,加新的培養(yǎng)液到離心管內(nèi),用吸管吹打使之形成細胞懸液。
步驟3、將細胞懸液分別接種到另外兩到三個培養(yǎng)瓶中,置37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
上述 是細胞傳代幾種步驟,科研者可以成功的進行細胞傳代培養(yǎng),為各種實驗和研究提供穩(wěn)定可靠的細胞來源。