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乳過氧化物酶屬氧化還原酶類。編號：EC1.11.1.7。存在于牛乳、眼淚、唾液等體液中的一種過氧化物酶，催化過氧化氫氧化底物并生成水。乳過氧化物酶（Lactoperoxidase，LPO）是過氧化物酶家族的成員之一，廣泛分布于自然界中，包括人類、植物和動物體內，是乳中天然含有的一種酶類。乳過氧化物酶存在于哺乳動物的乳腺、唾液和淚液腺體及其各自的分泌物，即牛奶、唾液和眼淚。它是牛乳和人乳中常見的成分之一，并且存在于迄今為止已經檢測過的所有哺乳動物乳中。乳過氧化物酶是發現的首個分泌型過氧化物酶，且在保護哺乳期婦女的乳腺以及新生兒腸道免受病原微生物侵害方面起重要作用，是機體防御體系的一部分。乳腺、唾液和淚腺中的過氧化物酶在化學和免疫學上性質相似。
LPO是牛乳中含量最豐富的酶之一，是一種等電點（pI）為15的堿性蛋白，由1條多肽鏈構成，包括612個氨基酸殘基和15個半胱氨酸殘基，相對分子質量約78kDa。含鐵量0.07%，含有1個血紅素（正鐵血紅素），其折疊結構包括23%α-螺旋、65%β-折疊和12%無序結構。人類蛋白質的氨基酸序列也有612個殘基，包括16個半胱氨酸。作為一種糖蛋白，LPO含有4~5個N-糖基化位點，碳水化合物含量約10%。對于某個給定的LPO，糖基化和部分脫酰胺化的差異可引起顯著的色譜和電泳異質性，牛乳中乳過氧化物酶（bLPO）具有至少10個酶活性相似的級分。LPO中含有一個鈣離子，它能與LPO緊密地結合，穩定其分子構象，因此鈣離子在LPO的穩定性和結構完整性中起重要作用。脊椎動物過氧化物酶（乳過氧化物酶（LPO）、甲狀腺過氧化物酶（TPO）、髓過氧化物酶（MPO）和嗜酸性粒細胞過氧化物酶（EPO））的活性位點是血紅素，一種原卟啉IX衍生物，通過2個酯鍵共價結合到遠端天冬氨酸和谷氨酸殘基。這些對脊椎動物過氧化物酶特異性的共價鍵導致血紅素的對稱性和平面性的改變，從而產生了這些蛋白質獨特的光譜性和氧化還原性質。序列分析顯示，人乳過氧化物酶（hLPO）分別與人髓過氧化物酶（hMPO）、人嗜酸性粒細胞過氧化物酶（hEPO）和人甲狀腺過氧化物酶（hTPO）有57%，58%和46%的序列同一性。這些高水平的序列同一性表明，半胱氨酸過氧化物酶（XPO）亞科的種酶可能具有顯著的結構相似性。
1. 熱穩定性
研究表明，LPO在滲透物和緩沖液中的熱穩定性小于在乳清或乳汁中，鈣離子濃度似乎對其熱敏性有較大影響，且熱變性的起始溫度為70℃。LPO在酸性條件（pH5.3）下的熱穩定性較差，其原因可能是由于分子中鈣的釋放。LPO是牛奶中熱穩定性最強的酶之一，其被破壞程度已被用作牛乳巴氏滅菌效率的指標。LPO僅在74℃通過短時間的巴氏滅菌被部分滅活，剩余活性來催化硫氰酸鹽和過氧化氫之間的反應。
2. pH
在pH4.4~6.7的范圍內，LPO為低質量濃度（0.5mg/L），pH5.4時的活性降低最快，每15min降低15%；而LPO濃度為高質量濃度（25mg/L），3h內不喪失活性。這種差異可能是由于在低濃度下LPO對玻璃容器表面的吸附作用，并且表明在測定LPO最終稀釋濃度時必須快速進行分析。LPO在pH3時保存會失活，在pH＜4時部分變性，當pH達10左右時則不會失活（室溫下）。使用2，2’-聯氮雙-（3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸）（ABTS）作為底物，研究得出LPO催化反應的最適pH為5~6，但取決于ABTS和H2O2的濃度。
3. 蛋白水解酶
LPO對許多蛋白水解酶穩定。據報道，胰蛋白酶和嗜熱菌蛋白酶不會使天然乳過氧化物酶失活，糜蛋白酶只能使其緩慢地失活。LPO不會被pH5的嬰兒胃液滅活，但會在pH2.5時被胃蛋白酶滅活。
4. 光化學
在核黃素存在的情況下，LPO似乎對光非常敏感。例如，LPO在10℃溫度下暴露6000lux持續4h后，在乳、乳清和滲透物中分別被滅活55%，75%和97%。在50mg/L的LPO緩沖溶液中（pH6.7），除非加入核黃素，否則不發生LPO的光化學滅活。光化學滅活不可逆，但通過加入半胱氨酸可以高效地防止光化學滅活現象。
在牛乳中，LPO是次于黃嘌呤氧化酶第二豐富的酶。其在牛乳中的質量濃度約為30mg/L，約占乳清蛋白的1%。人乳中LPO約為0.77±0.38mg/L；純化后的日本香川地區荷斯坦牛乳與娟姍牛乳清蛋白中LPO含量分別為0.2729和0.3807 mg/mL。不同于其他的抗菌蛋白，牛初乳中的LPO濃度較低，然而在產后的3~5d，濃度可迅速增長到最大值。
1)反應機理
LPO與硫氰酸鹽（SCN-）和過氧化氫（H2O2）共同存在時，才具有抗菌活性，稱為乳過氧化物酶體系（Lactoperoxidasesystem，簡稱LPOS），LPOS是乳中的一種天然抗菌體系。在H2O2存在的情況下，LPO催化氧化SCN-，產生HOSCN和OSCN-等氧化產物，氧化細菌蛋白質的巰基（—SH），使其轉化為硫（氧）基衍生物，阻礙細菌的新陳代謝及增殖，從而達到抑制細菌的目的。雖然乳蛋白質中也含有少量—SH基，但由于在自然狀態下是被包埋在分子內部，不易與LPOS接近，所以OSCN-的主要作用是存在于乳中細菌表面上的—SH，對β-乳球蛋白等乳蛋白沒有影響。SCN-的氧化產物介導的LPO催化反應來氧化蛋白質（酶）巰基：
2)抑菌活性
不同種類的細菌表現出對LPOS不同程度的抗性。革蘭氏陰性的過氧化氫陽性菌如假單胞菌屬、大腸菌群、沙門氏菌屬和志賀氏桿菌不僅會被LPO抑制生長，且在外源提供H2O2以及適宜的培養基條件下（pH、溫度、孵育時間、細胞密度等），這些細菌可能會被直接殺死；革蘭氏陽性的過氧化氫陰性菌如鏈球菌和乳桿菌通常會被LPOS抑制但不會被直接殺死。上述細菌對LPO的敏感度差異可能是由于細胞壁結構及其屏障性質的不同而形成的。I-是所有鹵化物中最容易氧化的，LPO催化I-產生I2，并且根據pH和I-濃度大小，還存在HIO和IO-。所以當SCN-和I-都存在于LPOS時，反應機理會更加復雜。在生物體液中，SCN-/I-比例通常為10︰100，并且SCN-能更有效地與I-競爭LPO的催化氧化，表明I-的影響可以忽略不計。然而(SCN)2可將I-氧化成I2，使得在存在I-的情況下，SCN-的氧化可能間接產生I2。由于LPO-H2O2-SCN-系統主要發揮抑菌作用，而LPOH2O2-I-系統則為殺菌作用，因此即使只有少量的I-氧化，對于抗微生物活性都會有重要的影響。據報道，SCN-和I-作為電子給體，LPOS主要體現殺菌作用，并且還能有效地殺死酵母和霉菌。
開發LPO的最大問題是其分離過程煩瑣、純化困難、制造成本較高，難以實現商業化，所以使用不同的分離純化技術來提取LPO一直是許多研究的重點，探索操作簡單方便、純化快速、成本低、效率高、開發潛力大的新型分離提純方法是今后要努力發展的方向。國外已有研究用不同的純化方法來提取LPO，如CM-Sephadex離子交換色譜法、Sephadexg-100凝膠過濾色譜法、苯基-瓊脂糖疏水親和層析、Toyopearl-SP陽離子交換層析法等。然而這些研究的純化方法比
較復雜且耗時長。此外，還有耦合IgG進行陽離子交換色譜和免疫親和層析法，用于從乳清中提純LPO。用陽離子交換膜從牛乳清中分離LPO且結果顯示，通過梯度洗脫可以得到高純度LPO，但最大回收率為73%，需要進一步提高。Pan等[38]制備一種嵌入球型纖維素的陽離子交換復合冷凍凝膠，用于從牛乳清分離LPO，獲得約92%的最大回收率，表明此發明的陽離子交換復合冷凍凝膠在從牛乳清分離少量蛋白如LPO中是非常有前景的，需要進一步的驗證和探索。還有研究使用硫酸銨沉淀和一步CM-纖維素陽離子交換層析法從牛乳清中分離高純度LPO，對工業應用方面的發展可能會有一定幫助。通過使用Sepharose4B-L-酪氨酸-磺酰胺親和層析的方法從牛奶中一步純化LPO，回收率為62.3%，此純化方法可多次應用，且成本較低，耗時較少；同時該研究結果表明磺胺對于LPO的動力學特性及其競爭性抑制作用，今后此方法有望指導其他過氧化物酶分離提純的開發。近年來，有研究通過使用染料親和層析從乳清中純化LPO，純化率最高可達86.5%±3.8%，純化因子為46.1±1.1，表明活性紅4-瓊脂糖凝膠可以應用于一步純化牛乳中LPO，且使用不同色譜載體的染料親和層析直接從乳清中回收和純化LPO有不錯的應用前景。
中國在這方面的研究相對較少，如采用超濾-離子交換色譜分步洗脫法，對牛初乳中的LPO進行分離和純化，結果顯示該酶回收率為76.17%，其最適pH為5.0~5.5，最適溫度為55℃。在70℃和75℃時LP酶活的熱失活曲線呈現一般植物過氧化物酶失活的雙相特征。采用強陽離子交換色譜梯度洗脫法，對牛乳中的LPO進行分離和純化，利用SDSPAGE定性檢測，分離出的LPO顯示為單一區帶，相對分子質量為76186U。該酶回收率為83.07%，純化倍數達44.63倍。近期有研究使用雙水相萃取技術從牛乳乳清中提取LPO，與一些傳統的分離方法相比，雙水相萃取技術所使用的分離設備簡單，在溫和條件下進行簡單操作，其獲得產品的回收率和純度較高，其酶活回收率和純化倍數分別為153.59%和1.99倍。今后的研究側重于確定牛奶中分離純化LPO的純化程度和酶活性等，從而為LPO的大規模開發提供科學依據。
[1] 營養科學詞典
[2] 乳過氧化物酶研究進展
[3] CN201510367541.2一種采用超濾法輔助硫酸銨鹽析提取乳過氧化物酶的方法